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學習凋亡試劑盒的檢測步驟點擊次數：1474 更新時間：2015-12-21
實驗方法
該實驗采用的是經過優化的喜樹堿誘導Jurkat細胞系凋亡實驗條件。其他類型的細胞需做相應調整。
該試劑盒在傳統及Attune?聲波聚焦流式細胞儀上驗證過，使用Attune?聲波聚焦流式細胞儀時，各種流速（25 μL/min 到 1,000 μL/min）都可以。
1.用有效方法誘導凋亡；設一不加誘導的陰性對照。
2.孵育之后收集細胞并用冷的PBS洗滌。
3.制備1×annexin V 結合緩沖液：按10次分析的量計算，加1 mL試劑C到4ml的去離子水中。
4.制備100μg/mL的PI工作液：用45μl 1×annexin V 結合緩沖液稀釋5μl試劑B，剩余可保存備用。
5.再次離心步驟2中收集的細胞，棄去上清，重懸在1×annexinV 結合緩沖液。計數并用上述緩沖液稀釋至約1 × 106 cells/mL。按每次實驗用量100μl準備充分。
6.在每100μl細胞懸液中加入5μl試劑A和1μl步驟4制備的PI工作液。
7. 室溫孵育15min。
8. 孵育結束，加400μl 1×annexin V 結合緩沖液，輕輕混勻后置于冰上。
9.盡快對染色細胞進行分析。可用FL1檢測530nm激發光，FL3檢測>575nm的激發光。細胞群將被分為三組：活細胞顯示弱熒光，凋亡細胞顯示綠色熒光，而死細胞則同時發紅、綠熒光。
10. 可用熒光顯微鏡驗證結果，適用檢測FITC、TRITC或Texas Red?的濾光片檢測。
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